ZEISS LSM 980 con Airyscan 2
Producto

ZEISS LSM 980 con Airyscan 2

Una experiencia confocal inigualable para una captura de imágenes Multiplex rápida y respetuosa con sus muestras

Para analizar muestras vivas de forma mínimamente invasiva debe utilizar una baja densidad de marcado en sus modelos biológicos. Esto requiere un excelente rendimiento de captura de imágenes, combinado con una fototoxicidad reducida y una elevada velocidad. LSM 980, la plataforma para la captura de imágenes 4D confocales, ha sido optimizada para facilitar la detección espectral de múltiples marcadores débiles al mismo tiempo y con la máxima eficiencia lumínica.

  • Gran variedad de marcadores fluorescentes de 380 nm a 900 nm
  • Flexibilidad espectral con hasta 36 canales simultáneos
  • Más información en menos tiempo con Airyscan 2 Multiplex
  • Investigación ampliada con captura de imágenes NLO, NIR, Cryo y SIM²
Células COS-7 captadas con LSM Plus, incluyendo el detector ZEISS NIR en el modo de canal.
Células COS-7 captadas con LSM Plus, incluyendo el detector ZEISS NIR en el modo de canal. Muestra cortesía de U. Ziegler y J. Doehner, Universidad de Zúrich, ZMB, Suiza.
Muestra cortesía de U. Ziegler y J. Doehner, Universidad de Zúrich, ZMB, Suiza.

Células Cos-7 captadas con LSM Plus, incluyendo el detector de NIR de ZEISS en el modo de canal.

Una experiencia confocal inigualable

Una trayectoria del haz con eficiencia lumínica y hasta 36 canales simultáneos y flexibilidad espectral completa hasta el rango del infrarrojo cercano (NIR) le ofrece la base perfecta para sus experimentos multicolor con muestras vivas. Además, LSM Plus mejora sin esfuerzo todos sus experimentos. La combinación única de captura de imágenes espectrales con una mejor relación señal-ruido y resolución permite disminuir la potencia del láser para sus experimentos con células vivas.

Leyenda: Células COS-7 captadas con LSM Plus, incluyendo el detector ZEISS NIR en el modo de canal. 
Muestra cortesía de U. Ziegler y J. Doehner, Universidad de Zúrich, ZMB, Suiza.

Drosophila germarium. Imagen captada con ZEISS Airyscan 2 seguida de la tecnología Joint Deconvolution.
Drosophila germarium. Imagen captada con ZEISS Airyscan 2 seguida de la tecnología Joint Deconvolution. Cortesía de T. Jacobs, AG Luschnig, WWU Münster; con T. Zobel, Münster Imaging Network, Alemania
Cortesía de T. Jacobs, AG Luschnig, WWU Münster; con T. Zobel, Münster Imaging Network, Alemania

Drosophila germarium. Imagen captada con ZEISS Airyscan 2, seguido de Joint Deconvolution.

Imágenes con mayor precisión

Airyscan 2 le permite hacer más cosas que cualquier detector LSM convencional. Cada uno de sus 32 elementos detectores recaba información adicional, mientras que todos ellos en conjunto captan más luz, lo que da lugar a resultados cuantitativos con superresolución. Mediante la adición de información estructural con la tecnología Joint Deconvolution (jDCV), puede aumentar aún más la resolución. También se pueden usar los modos Multiplex para obtener información de superresolución hasta 10 veces más rápido.

Leyenda: Drosophila germarium. Imagen captada con ZEISS Airyscan 2 seguida de la tecnología Joint Deconvolution.
Cortesía de T. Jacobs, AG Luschnig, WWU Münster; con T. Zobel, Münster Imaging Network, Alemania

ZEN BioApps: De imágenes bonitas a datos valiosos: analice sus imágenes de forma eficiente.
ZEN BioApps: De imágenes bonitas a datos valiosos: analice sus imágenes de forma eficiente.

ZEN BioApps: desde bonitas imágenes a valiosos datos. Analice sus imágenes de forma eficiente.

Aumente su productividad

El software de microscopía ZEN pone a su disposición un gran número de asistentes que le ayudarán a obtener resultados reproducibles en el menor tiempo posible. AI Sample Finder le ayuda a encontrar rápidamente las regiones de interés y deja más tiempo para los experimentos. La configuración inteligente le ayuda a aplicar los mejores ajustes de imagen para sus marcadores fluorescentes. El procesamiento directo permite la adquisición y el procesamiento de datos en paralelo. ZEN Connect le mantiene al tanto de todo, durante y después de la captura de imágenes, al compartir el historial completo del experimento.

Una trayectoria del haz con mayor eficiencia lumínica

  • Máxima precisión y flexibilidad espectral para sus experimentos

    LSM 980 le ofrece un amplio margen de libertad a la hora de configurar su experimento. El diseño de la trayectoria del haz de LSM 980 le asegura una captura de imágenes con la máxima precisión, lo cual es clave para visualizar la señal más baja e identificar todas las estructuras. Además, le proporciona la flexibilidad espectral que le permite seleccionar libremente marcadores de fluorescencia desde 380 nm hasta el rango del infrarrojo cercano (NIR).

Cámaras ováricas de Drosophila teñidas para F-actina (faloidina, magenta) y DE-cadherina (cian). Cortesía de T. Jacobs, AG Luschnig, WWU Münster; con T. Zobel, Münster Imaging Network, Alemania
Cámaras ováricas de Drosophila teñidas para F-actina (faloidina, magenta) y DE-cadherina (cian). Cortesía de T. Jacobs, AG Luschnig, WWU Münster; con T. Zobel, Münster Imaging Network, Alemania

LSM Plus

Experiencia confocal mejorada

LSM Plus mejora literalmente cualquier experimento confocal con facilidad, de forma independiente del modo de detección o del rango de emisión. Su deconvolución de filtro Wiener lineal prácticamente no precisa interacción y garantiza un resultado cuantitativo fiable. Al igual que en nuestro procesamiento con superresolución Airyscan de eficacia probada, la información subyacente de las propiedades ópticas se adapta de forma automática en función de la lente del objetivo, el índice de refracción y el rango de emisión.

Aplique LSM Plus sin ningún esfuerzo adicional y benefíciese de:

  • Mejor relación señal-ruido con elevada velocidad de captura y baja potencia de láser, lo cual es especialmente útil para la captura de imágenes de células vivas con bajos niveles de expresión
  • Mejor resolución de los datos espectrales con hasta 36 canales en un solo escaneo
  • Más información espacial y una mejora de la resolución aún mayor para muestras claras que permite cerrar el pinhole del LSM
  • Flujos de trabajo integrados para combinar las ventajas de LSM Plus con la captura de imágenes de superresolución de Airyscan

Leyenda: Cámaras ováricas de Drosophila teñidas para F-actina (faloidina, magenta) y DE-cadherina (cian). Cortesía de T. Jacobs, AG Luschnig, WWU Münster; con T. Zobel, Münster Imaging Network, Alemania

Esquema de la trayectoria del haz de Airyscan 2. (1) Espejo, (2) Filtros de emisión, (3) Óptica del zoom, (4) Disco de Airy, (5) Detector Airyscan

Esquema de la trayectoria del haz de Airyscan 2

Esquema de la trayectoria del haz de Airyscan 2. (1) Espejo, (2) Filtros de emisión, (3) Óptica del zoom, (4) Disco de Airy, (5) Detector Airyscan

(1) espejo, (2) filtros de emisión, (3) óptica de zoom, (4) disco Airy, (5) detector de Airyscan

Airyscan 2

Una combinación única de captura de imágenes de muy alta resolución y precisión

Airyscan 2 es un detector de área con 32 elementos de detección dispuestos de forma circular. Cada uno de estos elementos actúa como un pequeño orificio y aporta información de muy alta resolución mientras toda la zona de detección capta más luz que el ajuste confocal estándar. De esta forma se obtiene una eficiencia lumínica mucho mayor y una información estructural mejorada.

Células de levadura en germinación con proteína ubicada en la membrana mitocondrial interna (verde) y la matriz mitocondrial (magenta). Cortesía de K. Subramanian / J. Nunnari, Universidad de California, Davis, EE. UU.
Células de levadura en germinación con proteína ubicada en la membrana mitocondrial interna (verde) y la matriz mitocondrial (magenta). Cortesía de K. Subramanian / J. Nunnari, Universidad de California, Davis, EE. UU.
Células de levadura en germinación con proteína localizada en la membrana mitocondrial interna (verde) y en la matriz mitocondrial (magenta). Cortesía de K. Subramanian/J. Nunnari, Universidad de California, Davis, EE. UU.

32 puntos de vista para una imagen más completa

Desconvolución de alta potencia con Airyscan jDCV

Cada uno de los 32 elementos detectores de Airyscan tiene una vista ligeramente diferente de la muestra, de modo que se proporciona información espacial adicional que hace posible la tecnología Joint Deconvolution. Esto reduce aún más la distancia que se puede resolver entre dos puntos, hasta 90 nm. Sus experimentos con superresolución se beneficiarán de una mejor separación de los marcadores múltiples o individuales.

"Cuando captamos imágenes del retículo endoplasmático y las mitocondrias y vimos los diminutos detalles tras aplicar Airyscan Joint Deconvolution, pensamos que era una pasada. La nueva opción podría integrarse en nuestros protocolos de captura de imágenes con mucha facilidad. Nos impresionó la rapidez con la que se procesaron las imágenes, lo cual nos ayudó a tomar decisiones mientras aún seguíamos captando imágenes."

– Dra. Kelly Subramanian, estudiante de posdoctorado, Departamento de Biología Molecular y Celular, UC Davis

Mitocondria de una célula Arabidopsis thaliana. Comparación de la imagen confocal con Airyscan SR y Airyscan Joint Deconvolution.
 Cortesía de J.-O. Niemeier, AG Schwarzländer, WWU Münster, Alemania.
Cortesía de J.-O. Niemeier, AG Schwarzländer, WWU Münster, Alemania.

Mitocrondrias de una célula de Arabidopsis thaliana. Comparación de la imagen confocal con Airyscan SR y Airyscan Joint Deconvolution.

Mitocondria de una célula Arabidopsis thaliana. Comparación de la imagen confocal con Airyscan SR y Airyscan Joint Deconvolution. Cortesía de J.-O. Niemeier, AG Schwarzländer, WWU Münster, Alemania.

Los modos Multiplex para Airyscan 2

Campo de visión amplio y volúmenes de la muestra completa en el menor tiempo posible

En los modos Multiplex, las ventajas del detector de Airyscan se combinan con una iluminación adaptada y esquemas de lectura, lo cual le permite elegir entre diferentes opciones de paralelización. Los modos Multiplex utilizan el conocimiento de la forma del punto láser de excitación y la ubicación de cada uno de los elementos del detector de área para extraer más información espacial, incluso durante la lectura de píxeles en paralelo. El barrido con el láser de excitación sobre el campo de visión mejora la velocidad de adquisición, lo que supone un gran avance. La captura de más información espacial en el plano del orificio permite una reconstrucción final de la imagen con mejor resolución que el muestreo de adquisición.

Captura de imágenes eficiente con superresolución de un campo de visión grande
Captura de imágenes eficiente con superresolución de un campo de visión grande
Cortesía de A. Politi, J. Jakobi y P. Lenart, MPI de química biofísica, Göttingen, Alemania.

Captura de imágenes eficiente de muy alta resolución de un campo de visión grande: células HeLa teñidas para ADN (azul, Hoechst 44432), microtúbulos (amarillo, antitubulina Alexa 488) y actina F (magenta, faloidina Abberior STAR Red).

Captura de imágenes eficiente con superresolución de un campo de visión grande: Células HeLa teñidas para ADN (azul, Hoechst 44432), microtúbulos (amarillo, antitubulina Alexa 488) y F-actina (magenta, faloidina Abberior STAR Red). Cortesía de A. Politi, J. Jakobi y P. Lenart, MPI para química biofísica, Göttingen, Alemania.

Modos Multiplex de ZEISS LSM 980

LSM 980

Airyscan SR

Multiplex SR-4Y

Multiplex SR-8Y

Multiplex CO-8Y

Paralelización

1

4

8

8

Resolución

120/120

140/140

120/160

Confocal o mejor

Máx. fps con máx. campo de visión

0,2 (Zoom 1,7)

1,0 (Zoom 1)

2,0 (Zoom 1)

9,6 (Zoom 1)

Marcado de anticuerpos, estructuras pequeñas

+++++

++++

+++

++

Marcado de anticuerpos, traslape

++

++++

++++

+++

Captura de imágenes de células vivas

++

+++

++++

+++++

Dynamics Profiler​

Dynamics Profiler​

Acceso fácil a la dinámica molecular subyacente​

ZEISS Dynamics Profiler le ofrece un fácil acceso a la concentración y la dinámica moleculares en las muestras vivas. La información obtenida con el detector ZEISS Airyscan permite caracterizar el comportamiento heterogéneo de la difusión, ideal para examinar condensados celulares. Las mediciones del flujo determinan la velocidad y la dirección del movimiento activo en los líquidos, además de aportar nuevos datos exclusivos relacionados con la microfluídica y los órganos sobre chip. Explore incluso sus muestras más delicadas sin una exposición lumínica excesiva ni tiempo experimental prolongado, y amplíe la recogida de datos para mejorar sus investigaciones.

Eficiencia cuántica (QE) espectral habitual de los detectores ZEISS LSM 980, que incluyen NIR.
Eficiencia cuántica (QE) espectral habitual de los detectores ZEISS LSM 980, incluyendo NIR.

Eficiencia cuántica (QE) espectral habitual de los detectores ZEISS LSM 980, incluyendo NIR.

Captura de imágenes en el infrarrojo cercano (NIR)

Amplíe su rango espectral

La ampliación del rango espectral en el NIR le permite usar más marcadores en paralelo. Podrá visualizar estructuras adicionales con más tinciones en sus experimentos multicolor, ya que los detectores Quasar y NIR son compatibles con los experimentos espectrales con Multiplex. Los marcadores fluorescentes de NIR son menos fototóxicos para las muestras vivas, debido a que cuentan con una longitud de onda más larga. Esto le permitirá investigar muestras vivas durante periodos prolongados, limitando al mismo tiempo la influencia de la luz. Además, la luz de los rangos de longitud de onda más larga se dispersa menos por el tejido de la muestra, lo cual aumenta la profundidad de penetración.

Independientemente del objetivo que desee alcanzar con los marcadores de NIR, el detector de NIR de doble canal combina dos tecnologías de detección diferentes (GaAsP rojo ampliado y GaAs) para una precisión de hasta 900 nm.

Captura de imágenes en el infrarrojo cercano (NIR)
Células Cos-7, DAPI (magenta), antitubulina Alexa 568 (azul), actina faloidina-OG488 (amarillo) y Tom20-Alexa 750 (rojo).
Células COS-7 (magenta), antitubulina Alexa 568 (azul), actina faloidina-OG488 (amarillo) y Tom20-Alexa 750 (rojo). Muestra cortesía de Urs Ziegler y Jana Doehner, Universidad de Zúrich, ZMB, Suiza.
Muestra cortesía de Urs Ziegler y Jana Doehner, Universidad de Zúrich, ZMB, Suiza.

Células Cos-7, DAPI (magenta), antitubulina Alexa 568 (azul), actina faloidina-OG488 (amarillo) y Tom20-Alexa 750 (rojo).

Imagen en modo Lambda en el espectro visible y NIR. Señales individuales separadas mediante desmezclado lineal. Proyección de máxima intensidad de un z-stack.

Células Cos-7

Células Cos-7, DAPI (magenta), antitubulina Alexa 568 (azul), actina faloidina-OG488 (amarillo) y Tom20-Alexa 750 (rojo). Imagen en modo Lambda en el espectro visible y NIR. Señales individuales separadas mediante desmezclado lineal. Proyección de máxima intensidad de un z-stack.

Muestra cortesía de Urs Ziegler y Jana Doehner, Universidad de Zúrich, ZMB, Suiza.

Comparación del detector ZEISS LSM 980 MA-PMT y ZEISS NIR GaAsP; excitación con láser de 639 nm con la misma potencia del láser. El rango de emisión para MA-PMT se ha establecido en 660-757 nm, y para el detector NIR en 660-900 nm.
Comparación del detector ZEISS LSM 980 MA-PMT y ZEISS NIR GaAsP; excitación con láser de 639 nm con la misma potencia del láser. El rango de emisión para MA-PMT se ha establecido en 660-757 nm, y para el detector NIR en 660-900 nm.

Microtúbulos de célula Cos-7 (antitubulina AF700)

Comparación del detector ZEISS LSM 980 MA-PMT (izquierda) y ZEISS NIR GaAsP (derecha); excitación con láser de 639 nm con la misma potencia del láser. El rango de emisión para MA-PMT se ha establecido en 660-757 nm, y para el detector NIR en 660-900 nm.

Muestra cortesía de Urs Ziegler y Jana Doehner, Universidad de Zúrich, ZMB, Suiza.

Antes del procesamiento con LSM Plus
Después del procesamiento con LSM Plus

Captura de imágenes espectrales simultáneas

Separación rápida y precisa de todos los marcadores fluorescentes

Para separar incluso las señales muy solapadas o para eliminar la autofluorescencia, se puede realizar un escaneo lambda usando el rango de detección completo con hasta 36 detectores, minimizando la iluminación y el tiempo necesarios. Mejore la captura de imágenes espectrales en todo el rango de longitudes de onda, incluyendo huellas en línea, con LSM Plus.

El ejemplo muestra un músculo cremáster de murino, con marcado multicolor con Hoechst (azul), Prox-1 Alexa488 (verde), neutrófilos Ly-GFP, PECAM1 Dylight549 (amarillo), SMA Alexa568 (naranja), VEGEF-R3 Alexa594 (rojo), plaquetas Dylight 649 (magenta). Captado con detector GaAsP de 32 canales usando huellas en línea.

Leyenda: Comparación de la mejor relación señal-ruido antes y después del procesamiento con LSM Plus. Cortesía del Dr. S. Volkery, MPI para Biomedicina Molecular, Münster, Alemania

Diagrama de energía de microscopía de dos fotones

Diagrama de energía de microscopía de dos fotones

Diagrama de energía de microscopía de dos fotones

Microscopía multifotón con LSM 980 NLO

Captura de imágenes de tejido profunda y no invasiva para muestras vivas o fijadas

La microscopía multifotón (microscopía con dos fotones, microscopía óptica no lineal, NLO) es un método de preferencia para la captura de imágenes no invasiva de tejidos profundos de muestras vivas o fijadas, especialmente en neurociencia. La microscopía multifotón le saca partido al hecho de que los tejidos absorben y dispersan en menor medida las longitudes de onda más largas (600-1300 nm), por lo que estas penetran a mayor profundidad en la muestra mientras siguen formando un punto focal. La energía necesaria para excitar un colorante fluorescente no la proporciona un solo fotón, sino dos fotones con la mitad de energía cada uno. La probabilidad de que dos fotones alcancen el fluoróforo al mismo tiempo solo ocurre en el punto focal. Es por ello que la luz de emisión se origina en el plano focal y se puede detectar de forma eficiente, generando una sección óptica al tiempo que omite un orificio.

Leyenda: diagrama de energía de microscopía de dos fotones

Microscopía multifotón con LSM 980 NLO

Combine funcionalidad confocal y multifotón

Un microscopio de barrido láser que comparte funcionalidades confocales y multifotón le permitirá acceder a ambas tecnologías de la forma que mejor se adecúe a sus experimentos:

  • Combine una penetración profunda en los tejidos con una mayor precisión, resolución y velocidad.
  • Reduzca la exposición a la luz y obtenga separaciones más claras de todas las señales de emisión
  • Capte luz de forma eficiente con detectores GaAsP NDD altamente sensibles cerca de la señal
  • Visualice estructuras no teñidas con excitación multifotón mediante una segunda o tercera generación de armónicos (SHG, THG).
Captado con excitación de láser de dos fotones a 1000 nm, procesado con LSM Plus.
Muestra cortesía de Fish Facility, Leibniz-Institute on Aging – Fritz-Lipmann-Institut e.V. (FLI), Jena, Alemania
Vasculatura del rombencéfalo del pez cebra. Captado con excitación de láser de dos fotones a 1000 nm, procesado con LSM Plus.
El volumen de 100 µm se adquirió con excitación láser de dos fotones a 1000 nm con el detector no desescaneado GaAsP BiG.2. El conjunto de datos estaba codificado por colores en función de la profundidad y se creó una proyección ortogonal con ZEN blue. Muestra cortesía del Prof. J. Herms, LMU, Múnich, Alemania.
Corte de cerebro de ratón con marcador citoplasmático neuronal GFP
Principio de espectroscopia de correlación de fluorescencia (Fluorescence Correlation Spectroscopy, FCS). Trayectoria de una partícula fluorescente mediante el volumen de detección

Principio de espectroscopia de correlación de fluorescencia (Fluorescence Correlation Spectroscopy, FCS).

Principio de espectroscopia de correlación de fluorescencia (Fluorescence Correlation Spectroscopy, FCS). Trayectoria de una partícula fluorescente mediante el volumen de detección

Trayectoria de una partícula fluorescente mediante el volumen de detección

Datos que trascienden la captura de imágenes

Más opciones para sus investigaciones

La combinación de la iluminación del punto láser, el barrido lineal y los detectores que pueden captar la señal en el modo de recuento de fotones convierten a LSM 980 en algo más que un dispositivo de captura de imágenes:

  • Espectroscopia de correlación de imágenes de barrido (RICS)
  • Espectroscopia de correlación de fluorescencia (FCS)
  • Espectroscopia de correlación cruzada de fluorescencia (FCCS)
  • Transferencia de energía de resonancia de Förster (FRET)
  • Recuperación de la fluorescencia posterior al fotoblanqueamiento (FRAP)
  • Microscopía de tiempo de vida de fluorescencia (FLIM)


Leyenda: principio de la espectroscopia de correlación de fluorescencia (FCS). Trayectoria de una partícula fluorescente por el volumen de detección

Aplicaciones

ZEISS LSM 980 en funcionamiento

  • Células COS-7 con Anti-TOM20 AF750 (rojo), antitubulina AF700 (cian), actina faloidina-OG488 (magenta), DAPI (naranja).
  • Señales de fluorescencia separadas. La comparación ilustra cómo mejora LSM Plus la relación señal-ruido y la resolución.
  • Células COS-7 con Anti-TOM20 AF750 (rojo), antitubulina AF700 (cian), actina faloidina-OG488 (magenta), DAPI (naranja).

    Imagen con LSM Plus, donde se incluye el detector NIR de ZEISS en el modo de canal.

    Células Cos-7 Anti-TOM20 AF750 (rojo), antitubulina AF700 (cian), actina faloidina-OG488 (magenta), DAPI (naranja).  Muestra cortesía de U. Ziegler y J. Doehner, Universidad de Zúrich, ZMB, Suiza.
    Muestra cortesía de U. Ziegler y J. Doehner, Universidad de Zúrich, ZMB, Suiza.

    Las señales de fluorescencia se separaron mediante desmezclado lineal, lo cual facilitó una separación clara entre las tinciones solapadas espectralmente de Alexa 700 y Alexa 750.

    Células COS-7 con Anti-TOM20 AF750 (rojo), antitubulina AF700 (cian), actina faloidina-OG488 (magenta), DAPI (naranja).

  • Señales de fluorescencia separadas. La comparación ilustra cómo mejora LSM Plus la relación señal-ruido y la resolución.

    Señales de fluorescencia separadas. La comparación ilustra cómo mejora LSM Plus la relación señal-ruido y la resolución.

    Células Cos-7 Anti-TOM20 AF750 (rojo), antitubulina AF700 (cian), actina faloidina-OG488 (magenta), DAPI (naranja). Captado con LSM Plus, incluyendo el detector de NIR de ZEISS en el modo de canal. Muestra cortesía de U. Ziegler y J. Doehner, Universidad de Zúrich, ZMB, Suiza.
    Muestra cortesía de U. Ziegler y J. Doehner, Universidad de Zúrich, ZMB, Suiza.

    Células Cos-7 Anti-TOM20 AF750 (rojo), antitubulina AF700 (cian), actina faloidina-OG488 (magenta), DAPI (naranja). Captado con LSM Plus, incluyendo el detector de NIR de ZEISS en el modo de canal.

    Las señales de fluorescencia se separaron mediante desmezclado lineal, lo cual facilitó una separación clara entre las tinciones solapadas espectralmente de Alexa 700 y Alexa 750.

    Señales de fluorescencia separadas. La comparación ilustra cómo mejora LSM Plus la relación señal-ruido y la resolución.

NIR: aumente el número de marcadores

En el complejo mundo de la biología, la capacidad de aumentar el número de marcadores supone una gran ventaja. LSM 980 puede captar imágenes de múltiples marcadores simultáneamente, por lo que cubre un amplio rango de emisión de hasta 900 nm. Estas células Cos-7 se marcaron con 4 fluoróforos diferentes, dos de los cuales presentan su pico de emisión en el rango del infrarrojo cercano (NIR), Alexa 700 y Alexa 750. Con los detectores flexibles Quasar y NIR de LSM 980 se captaron imágenes de todos los marcadores con una precisión óptima. La vista ampliada ilustra cómo LSM Plus mejora la relación señal-ruido y la resolución.

  • Neuronas cerebrales de cucaracha (Alexa 488: amarillo, Alexa 647: magenta) y ADN (Hoechst: cian), sin LSM Plus.
    Neuronas cerebrales de cucaracha (Alexa 488: amarillo, Alexa 647: magenta) y ADN (Hoechst: cian), con LSM Plus.

    LSM Plus

    Neuronas del cerebro de una cucaracha (Alexa 488: amarillo, Alexa 647: magenta) y ADN (Hoechst: cian), sin LSM Plus (izquierda) y con LSM Plus (derecha).

    Muestra cortesía de M. Paoli, Galizia Lab, Universidad de Constanza, Alemania.

  • Tinción con F-actina (faloidina) de un canal anular en la cámara ovárica de Drosophila.
    Tinción con F-actina (faloidina) de un canal anular en la cámara ovárica de Drosophila.

    Airyscan Joint Deconvolution

    Tinción con F-actina (faloidina) de un canal anular en la cámara ovárica de una Drosophila.

    Cortesía de T. Jacobs, AG Luschnig, WWU Münster; con T. Zobel, Münster Imaging Network, Alemania

  • Cerebelo de ratón marcado con anticalbindina (Alexa-568) y anti-GFAP (Alexa-488)
  • Cerebelo de ratón marcado con anticalbindina (Alexa-568) y anti-GFAP (Alexa-488).
  • Cerebelo de ratón marcado con anticalbindina (Alexa-568) y anti-GFAP (Alexa-488).
  • Cerebro de pez cebra y vasculatura ocular (verde) y segunda generación de armónicos (gris) en orientación sagital.
  • Cerebelo de ratón marcado con anticalbindina (Alexa-568) y anti-GFAP (Alexa-488). Ambos fluoróforos se excitaron con el láser de 2 fotones a 780 nm y los espectros de emisión se recogieron simultáneamente con el detector BIG.2. Para cubrir toda la estructura se utilizó el mosaico y unión 3D y se creó una proyección ortogonal en ZEN Blue. Se obtuvieron imágenes de zonas específicas de interés con el detector Airyscan 2 para adquirir imágenes de alta resolución de las células de Purkinje. Se procesaron los conjuntos de datos Airyscan 2 y se crearon proyecciones ortogonales con ZEN Blue. Las imágenes individuales de superresolución se alinearon con el cerebelo utilizando ZEN Connect. Muestra cortesía de L. Cortes, Universidad de Coimbra, Portugal.
  • Cerebelo de ratón marcado con anticalbindina (Alexa-568) y anti-GFAP (Alexa-488).
    Cerebelo de ratón marcado con anticalbindina (Alexa-568) y anti-GFAP (Alexa-488).  Muestra cortesía de L. Cortes, Universidad de Coimbra, Portugal.
    Muestra cortesía de L. Cortes, Universidad de Coimbra, Portugal.

    Cerebelo de ratón marcado con anticalbindina (Alexa-568) y anti-GFAP (Alexa-488).

  • Cerebelo de ratón marcado con anticalbindina (Alexa-568) y anti-GFAP (Alexa-488).
    Cerebelo de ratón marcado con anticalbindina (Alexa-568) y anti-GFAP (Alexa-488).  Muestra cortesía de L. Cortes, Universidad de Coimbra, Portugal.
    Muestra cortesía de L. Cortes, Universidad de Coimbra, Portugal.

    Cerebelo de ratón marcado con anticalbindina (Alexa-568) y anti-GFAP (Alexa-488).

    Cerebelo de ratón marcado con anticalbindina (Alexa-568) y anti-GFAP (Alexa-488).

  • Cerebro de pez cebra y vasculatura ocular (verde) y segunda generación de armónicos (gris) en orientación sagital. Se adquirió un volumen de 267 μm con el láser de dos fotones a 1000 nm y se detectó la emisión con el detector GaAsP BIG.2. SHG permitió la visualización de las estructuras tisulares, como las células retinianas y los músculos oculares. Muestra cortesía de Fish Facility, Leibniz-Institute on Aging – Fritz-Lipmann-Institut e.V. (FLI), Jena, Alemania.

Microscopía multifotón

La microscopía multifotónica se puede combinar con mosaicos y cosido de imágenes en 3D para captar imágenes de muestras grandes, como este ejemplo de cerebelo de ratón. La captura de imágenes de Airyscan 2 en el modo de superresolución se puede usar para captar imágenes de superresolución de una zona de interés específica y se puede combinar fácilmente con la captura de imágenes con dos fotones. ZEN Connect puede aunar toda la información de sus diferentes experimentos, lo que le permitirá mapear imágenes de alta resolución en la estructura de mayor tamaño, manteniendo el contexto y simplificando la organización de sus archivos.

  • Cortesía de M. Paoli, Laboratorio Galizia, Universidad de Constanza, Alemania.

Captura de imágenes en 3D y 4D

Los ganglios cerebrales, torácicos y abdominales de las cucarachas se unen mediante haces conjuntivos bilaterales de interneuronas ascendentes y descendentes que forman el cordón nervioso ventral. En esta preparación, los tejidos conjuntivos izquierdo y derecho se marcaron individualmente (Alexa 488: verde, Alexa 647: magenta) en sentido posterior al ganglio subesofágico para observar la extensión de su inervación dentro de los diferentes neurófilos y a través de las zonas contralaterales e ipsilaterales del cerebro (ADN marcado con DAPI: cian). La captura de imágenes se realizó mediante traslape y cosido para captar todo el volumen (3 × 2,3 × 0,26 mm). La animación en 3D del conjunto de datos se realizó con arivis Vision 4D, ideal para generar y analizar grandes conjuntos de datos. El visualizador 4D de arivis Vision 4D se puede configurar para ajustar la apariencia de los canales individuales de forma independiente, con el fin de resaltar características específicas.

Estos ajustes, junto con los planos de corte o la diferente opacidad de los canales individuales, pueden almacenarse en fotogramas clave que el software interpola automáticamente para generar una animación continua. Estas animaciones se pueden previsualizar y editar antes de producir renderizados de vídeo de alta resolución.

  • Sección de tejido intestinal de ratón teñida para sustancia P (cian, Alexa 488) marcando los contactos presinápticos del sistema nervioso entérico, HuC/D (amarillo, Alexa 568) marcando las neuronas entéricas y la óxido nítrico sintasa neuronal (nNOS, rojo, Alexa 750) marcando una subpoblación de neuronas enterales. Muestra cortesía de Pieter Vanden Berghe, LENS y CIC, Universidad de Leuven, Bélgica.
  • Este proyecto de ZEN Connect documenta el experimento realizado con el explante de tejido ependimario del sistema ventricular de un cerebro de ratón.
  • Rápidamente se obtiene una vista general de los cilios móviles marcados con fluorescencia sobre explante de tejido ependimario de cerebro de ratón captada mediante funciones de mosaico con Airyscan 2 en modo Multiplex CO-8Y para encontrar regiones de interés.
  • Captura de imágenes en directo con 143 fotogramas por segundo de cilios móviles marcados con fluorescencia de epéndimo cerebral.
  • Sección de tejido intestinal de ratón teñida para sustancia P (cian, Alexa 488) marcando los contactos presinápticos del sistema nervioso entérico, HuC/D (amarillo, Alexa 568) marcando las neuronas entéricas y la óxido nítrico sintasa neuronal (nNOS, rojo, Alexa 750) marcando una subpoblación de neuronas enterales. Muestra cortesía de Pieter Vanden Berghe, LENS y CIC, Universidad de Leuven, Bélgica.
    Sección de tejido intestinal de ratón teñida para sustancia P (cian, Alexa 488) marcando los contactos presinápticos del sistema nervioso entérico, HuC/D (amarillo, Alexa 568) marcando las neuronas entéricas y la óxido nítrico sintasa neuronal (nNOS, rojo, Alexa 750) marcando una subpoblación de neuronas enterales. Muestra cortesía de Pieter Vanden Berghe, LENS y CIC, Universidad de Leuven, Bélgica. Muestra cortesía de Pieter Vanden Berghe, LENS y CIC, Universidad de Leuven, Bélgica.
    Muestra cortesía de Pieter Vanden Berghe, LENS y CIC, Universidad de Leuven, Bélgica.

    Sección de tejido intestinal de ratón teñida para sustancia P (cian, Alexa 488) marcando los contactos presinápticos del sistema nervioso entérico, HuC/D (amarillo, Alexa 568) marcando las neuronas entéricas y la óxido nítrico sintasa neuronal (nNOS, rojo, Alexa 750) marcando una subpoblación de neuronas enterales. 

    Sección de tejido intestinal de ratón teñida para sustancia P (cian, Alexa 488) marcando los contactos presinápticos del sistema nervioso entérico, HuC/D (amarillo, Alexa 568) marcando las neuronas entéricas y la óxido nítrico sintasa neuronal (nNOS, rojo, Alexa 750) marcando una subpoblación de neuronas enterales. Muestra cortesía de Pieter Vanden Berghe, LENS y CIC, Universidad de Leuven, Bélgica.

  • Este proyecto de ZEN Connect documenta el experimento realizado con el explante de tejido ependimario del sistema ventricular de un cerebro de ratón.
    Este proyecto de ZEN Connect documenta el experimento realizado con el explante de tejido ependimario del sistema ventricular de un cerebro de ratón.

    Este proyecto de ZEN Connect documenta el experimento realizado con el explante de tejido ependimario del sistema ventricular de un cerebro de ratón. Todos los datos adquiridos de la sesión del experimento se mantienen en contexto. Las imágenes de visión general por cámara y LSM permiten registrar con precisión la localización de los latidos ciliares adquiridos dentro de la muestra. Además, se añade como referencia el mapa de flujo generado por los cilios a lo largo de la pared ependimaria.

  • Rápidamente se obtiene una vista general de los cilios móviles marcados con fluorescencia sobre explante de tejido ependimario de cerebro de ratón captada mediante funciones de mosaico con Airyscan 2 en modo Multiplex CO-8Y para encontrar regiones de interés.
    Rápidamente se obtiene una vista general de los cilios móviles marcados con fluorescencia sobre explante de tejido ependimario de cerebro de ratón captada mediante funciones de mosaico con Airyscan 2 en modo Multiplex CO-8Y para encontrar regiones de interés.

    Rápidamente se obtiene una vista general de los cilios móviles marcados con fluorescencia sobre explante de tejido ependimario de cerebro de ratón captada mediante funciones de mosaico con Airyscan 2 en modo Multiplex CO-8Y para encontrar regiones de interés. Pila Z visualizada en codificación de profundidad coloreada. Se documenta la posición exacta de los cilios móviles registrados.

  • Captura de imágenes en directo con 143 fotogramas por segundo de cilios móviles marcados con fluorescencia de epéndimo cerebral. Adquirida con el modo Airyscan CO-8Y que combina calidad de imagen y velocidad; para un análisis detallado de la dirección y frecuencia del latido ciliar. © Cortesía de G. Eichele, Instituto Max Planck de química biofísica, Göttingen, Alemania.

Navegación y correlación sin complicaciones

A medida que el mundo de la microscopía emprende una transición gradual hacia muestras de mayor tamaño, cada vez es más importante mantener el contexto de posición y guardar un registro de las áreas captadas. AI Sample Finder clasifica automáticamente el portamuestras, identifica la muestra, ubica el enfoque y crea una imagen general rápida usando el detector T-PMT o la cámara. Puede navegar libremente usando la imagen general para orientarse y desplazarse sin esfuerzo hacia las estructuras de interés. De este modo se asegurará de estar invirtiendo su tiempo en captar imágenes de las regiones relevantes para su investigación. ZEN Connect correlaciona todos los datos asociados a la muestra.

En este ejemplo, el tejido intestinal del ratón se marcó con tres fluoróforos que abarcaban un espectro de emisión de 500-850 nm. AI Sample Finder identificó automáticamente el portamuestras y creó una imagen general usando el T-PMT para captar el marcador Alexa 488. La imagen general se usó para navegar por la muestra e identificar regiones de interés. Los detectores Quasar y NIR de ZEISS LSM 980 se utilizaron para captar imágenes de los marcadores visibles e invisibles con una precisión óptima.

Descargas

    • ZEISS LSM 980 with Airyscan 2

      Your Unique Confocal Experience for Fast and Gentle Multiplex Imaging

      8 MB
    • Flyer: ZEISS LSM 980 with Airyscan 2

      Your Unique Confocal Experience for Fast and Gentle Multiplex Imaging

      1 MB
    • ZEISS Dynamics Profiler

      Your Easy Access to Underlying Molecular Dynamics in Living Samples

      2 MB


    • ZEISS Dynamics Profiler

      Follow dynamic biological processes and reveal spatial molecular characteristics

      3 MB
    • The Basic Principle of Airyscanning

      1 MB
    • ZEISS LSM 9 Family with Airyscan 2

      Multiplex Mode for Fast and Gentle ConfocalSuperresolution in Large Volumes

      3 MB
    • A Practical Guide of Deconvolution

      2 MB


Visite el Centro de descargas de ZEISS para consultar las traducciones disponibles y otros manuales.

Contacto ZEISS Microscopy

Contacto

Cargando el formulario...

/ 4
Siguiente paso:
  • Paso 1
  • Paso 2
  • Paso 3
Contacto
Información necesaria
Información opcional

Para obtener más información sobre el procesamiento de datos en ZEISS, consulte nuestra declaración de protección de datos.