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Imagen de producto de ZEISS LSM 990
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ZEISS LSM 990

Captura de imágenes multimodal de primera categoría combinada en un solo sistema confocal

ZEISS LSM 990 combina una serie inédita de opciones de captura de imágenes que le ayudarán a explorar nuevas dimensiones en sus investigaciones. Profundice en sus investigaciones biológicas con superresolución de 90 nm, captura de imágenes volumétrica y de alta velocidad o la separación de diez marcadores fluorescentes simultáneamente. Comprenda la dinámica molecular, las interacciones entre proteínas y los procesos fisiológicos con un microscopio confocal que amplía los límites de la captura de imágenes de células vivas y el diseño experimental multimodal.

  • Un mundo de posibilidades para su investigación
  • Captura de imágenes de fluorescencia tan colorida como la vida misma
  • Información única de la dinámica molecular y las interacciones entre proteínas

Libertad para explorar

ZEISS LSM 990 puede configurarse de muchas formas diferentes en función de sus requisitos de captura de imágenes, desde un sistema confocal puro hasta una plataforma de captura de imágenes que integre todas las modalidades disponibles. Si desea aprovechar los puntos fuertes específicos para sus aplicaciones más complejas, le recomendamos que elija una de las siguientes configuraciones, o que las combine según sus necesidades.

  • LSM Airyscan

    Captura de imágenes de superresolución sensibles y de alta velocidad y caracterización molecular
    Complejo sinaptonémico con una estructura tripartita claramente definida. Cortesía de Suixing Fan, Universidad de Ciencia y Tecnología de China

    LSM 990 Airyscan permite realizar una gran variedad de capturas de imágenes de superresolución sensibles y de alta velocidad, así como la caracterización del comportamiento molecular desde el nivel celular hasta el organísmico.

    Obtenga más información sobre LSM Airyscan
    • Mejor información estructural añadida fácilmente a su experimento
    • Mejora simultánea de la resolución espacial y temporal
    • Acceso fácil a la dinámica molecular subyacente en las muestras vivas

  • LSM Lightfield 4D

    Captura de imágenes instantánea, volumétrica y de alta velocidad de organismos vivos
    Captura de imágenes volumétrica instantánea de un corazón de pez cebra embrionario latiendo. Cortesía de Stone Elworthy y Emily Noël, Facultad de Biociencias, Universidad de Sheffield, Reino Unido

    LSM 990 Lightfield 4D amplía su LSM con la capacidad de capturar volúmenes completos al instante con una sola toma, para realizar un seguimiento de los procesos dinámicos a alta velocidad y durante largos periodos de tiempo.

    Obtenga más información sobre LSM Lightfield 4D
    • Procesos fisiológicos y neuronales de alta velocidad capturados en 3D
    • Observación delicada de organismos enteros durante largos periodos de tiempo
    • Recogida de información más rápida en muestras grandes con múltiples marcadores

  • LSM Spectral Multiplex

    Captura de imágenes de multifluorescencia en todo el rango de longitudes de onda
    Multiplexación espectral avanzada de las paredes celulares de células de levadura en ciernes. Muestra cortesía de Michal Skruzny, ZEISS Microscopy GmbH

    LSM 990 Spectral Multiplex destaca en la separación espectral de marcadores fluorescentes. Optimice sus experimentos avanzados de multiplexación espectral con un gran número de marcadores de proteínas y una clara separación de las señales de fluorescencia.

    Obtenga más información sobre LSM Spectral Multiplex
    • Información espectral de 380 a 900 nm tomada en un solo escaneo
    • Separación fiable de señales fluorescentes
    • Mayor productividad con experimentos polifacéticos optimizados
imagen de folleto de producto de LSM 990

ZEISS LSM 990

Captura de imágenes multimodal de primera categoría combinada en un solo sistema confocal

Más allá de un microscopio confocal

Un mundo de posibilidades para su investigación

Los microscopios confocales se han convertido en sinónimo de seccionamiento óptico avanzado y máxima flexibilidad de captura de imágenes: ningún otro microscopio puede adaptarse a una variedad semejante de muestras y experimentos. ZEISS LSM 990 lleva esta versatilidad al siguiente nivel, ya que combina una superresolución de alta velocidad, una adquisición instantánea de volúmenes sin precedentes, una mayor penetración en la profundidad y una separación espectral sobre la marcha de más de diez marcadores en un solo escaneo de imagen. Además, gracias a la integración de la fotomanipulación o las mediciones de la dinámica molecular, se pueden realizar descubrimientos que van más allá de la mera captura de imágenes de intensidad de fluorescencia. Todos los componentes del sistema, en particular Airyscan 2, Lightfield 4D y hasta 36 detectores espectrales, se han desarrollado para permitir la mejor captura de imágenes de células vivas de su clase. Desarrolle su creatividad en diseño experimental y avance en su exploración científica.

Las células secretoras del intestino delgado producen agujeros en el borde en cepillo apical de F-actina. DAPI (blanco): ADN, faloidina (verde): F-actina, UEA-1 (rojo): células secretoras (Paneth, caliciforme), COX-1 (violeta): célula en penacho.

La esencia de la captura de imágenes confocal

Seccionamiento óptico de alta resolución de muestras grandes

Organoide primario de ratón de tres días. Las células secretoras del intestino delgado producen agujeros en el borde en cepillo apical de F-actina. DAPI (blanco): ADN, faloidina (verde): F-actina, UEA-1 (rojo): células secretoras (Paneth, caliciforme), COX-1 (violeta): célula en penacho.

Cortesía de Fabian Gärtner, Universidad de Stuttgart, Alemania

DAPI para ADN (con núcleos y espermatozoides), actina F marcada con faloidina. Proyección de máxima intensidad de un stack de 54 cortes.

Airyscan

Captura de imágenes delicada con superresolución de las estructuras más pequeñas

En lugar de que la luz pase a través de un pinhole para llegar a un único detector, Airyscan consta de 32 elementos detectores que actúan como pinholes muy pequeños y toma una imagen de plano pinhole en cada posición escaneada. Al combinar estos 32 pequeños detectores tipo pinhole en un gran detector de área, Airyscan permite recoger más luz y captar mayor información de frecuencia de una estructura.

Flagelos de esperma en testículos de Drosophila. DAPI para ADN (con núcleos y espermatozoides), actina F marcada con faloidina. Proyección de máxima intensidad de un stack de 54 cortes.

Muestra cortesía de Zhaoxuan Zhang, Ocean University of China, Qingdao

Neuronas piramidales (YFP-H) y microglías (CxCR3-GFP) observadas en un cerebro de ratón completo.

Microscopía multifotónica

Explorar a mayor profundidad

La microscopía multifotónica es perfecta para recuperar información de las zonas más profundas de los tejidos, como el cerebro, organismos enteros, organoides o esferoides, en muestras vivas o tejidos clarificados. Las longitudes de onda de excitación más largas (690 - 1300 nm) sufren una menor absorción y dispersión por parte de los tejidos, por lo que no se necesita ningún pinhole para lograr el seccionamiento óptico.

Neuronas piramidales (YFP-H) y microglías (CxCR3-GFP) observadas en un cerebro de ratón completo.

Cortesía de Severin Filser, DZNE Bonn, Alemania

Cámaras ováricas de Drosophila teñidas para F-actina (faloidina, magenta) y DE-cadherina (cian). Cortesía de T. Jacobs, AG Luschnig, WWU Münster; con T. Zobel, Münster Imaging Network, Alemania
Cámaras ováricas de Drosophila teñidas para F-actina (faloidina, magenta) y DE-cadherina (cian). Cortesía de T. Jacobs, AG Luschnig, WWU Münster; con T. Zobel, Münster Imaging Network, Alemania

LSM Plus

Mejora de la experiencia confocal

LSM Plus mejora cualquier experimento confocal con facilidad, de forma independiente del modo de detección o del rango de emisión. Su deconvolución de filtro Wiener lineal prácticamente no precisa interacción manual y garantiza un resultado cuantitativo fiable. La información subyacente sobre las propiedades ópticas del sistema, como la lente del objetivo, el índice de refracción y el rango de emisión, se utiliza para adaptar automáticamente los parámetros de procesamiento y obtener los mejores resultados.

Cámaras ováricas de Drosophila teñidas para F-actina (faloidina, magenta) y DE-cadherina (cian).

Cortesía de T. Jacobs, AG Luschnig, WWU Münster; con T. Zobel, Münster Imaging Network, Alemania

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Lightfield 4D

Adquisición de volúmenes a alta velocidad de células de gran movilidad en animales en desarrollo

Para captar realmente la esencia de los procesos biológicos, la captura de imágenes debe hacerse en 4D, ya que tanto el volumen como el tiempo son esenciales para investigar los sistemas vivos. Lightfield 4D ofrece una solución única al capturar imágenes de todo un volumen en un punto exacto en el tiempo, sin ningún retraso temporal.

Corazón de pez cebra embrionario latiendo a los 3 días de la fecundación. Adquisición de 3 latidos cardíacos completos en 1,2 segundos a 80 volúmenes por segundo.

Cortesía de Stone Elworthy y Emily Noël, Facultad de Biociencias, Universidad de Sheffield, Reino Unido

Más allá de las limitaciones espectrales

Captura de imágenes de fluorescencia tan colorida como la vida misma

La identificación y separación fiable de los marcadores fluorescentes son fundamentales en todo experimento multicolor, y más aún cuando la selección de colorantes se ha ampliado hasta el rango del infrarrojo cercano (NIR), y las colecciones de biomarcadores para multiplexación espectral permiten identificar aún más estructuras en simultáneo. Con hasta 36 canales, que garantizan una eficiencia cuántica óptima para cada longitud de onda, puede adquirirse un rango de emisión total de 380 nm a 900 nm con un solo escaneo de imagen. Seleccione el rango de detección que desee para cada marcador con el fin de mejorar sus resultados o utilice todos los canales dentro del rango de emisión necesario para obtener información espectral completa de cada fluoróforo en cada escaneo. Para obtener la máxima productividad durante la adquisición experimental multidimensional, la segregación espectral se produce sobre la marcha, mientras que LSM Plus mejora la relación señal-ruido y la resolución dentro del mismo pipeline de procesamiento.

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Multiplexación espectral avanzada de las paredes celulares de células de levadura en ciernes (Saccharomyces cerevisiae): 13 marcadores más autofluorescencia adquiridos en una vía con 5 láseres y 36 detectores; imagen segregada de los 13 marcadores sin fluorescencia.

Muestra cortesía de Michal Skruzny, ZEISS Microscopy GmbH

Muestra de corte cerebral de 5 colores adquirida mediante un escaneo lambda y procesada con LSM Plus. Canales tras la segregación espectral: DAPI, Map2-A488, parvalbúmina-A568, Iba-1-A647, VGAT-A750, autofluorescencia

Muestra de corte cerebral de 5 colores adquirida mediante un escaneo lambda y procesada con LSM Plus. Canales tras la segregación espectral: DAPI, Map2-A488, parvalbúmina-A568, Iba-1-A647, VGAT-A750, autofluorescencia.

Muestra cortesía de Luisa Cortes, Centro de Microscopia de Imagem de Coimbra, CNC, Universidad de Coimbra, Portugal

Células COS-7 (magenta), antitubulina Alexa 568 (azul), actina faloidina-OG488 (amarillo) y Tom20-Alexa 750 (rojo).

Células COS-7 (magenta), antitubulina Alexa 568 (azul), actina faloidina-OG488 (amarillo) y Tom20-Alexa 750 (rojo). Imagen capturada en modo Lambda en el espectro visible y del infrarrojo cercano (NIR). Señales individuales separadas mediante segregación lineal. Proyección de máxima intensidad de un z-stack.

Muestra cortesía de Urs Ziegler y Jana Doehner, Universidad de Zúrich, ZMB, Suiza

Más allá de la captura de imágenes

Información única de la dinámica molecular y las interacciones entre proteínas

Vaya más allá de la captura de imágenes de fluorescencia y añada nuevas dimensiones a sus experimentos. Emplee la espectroscopia de correlación de fluorescencia (FCS) y Spectral RICS para obtener información sobre las concentraciones, el movimiento y las interacciones entre proteínas de varios marcadores de forma simultánea. Con la información espacial del detector Airyscan, podrá acceder de forma exclusiva al comportamiento molecular de las proteínas, lo que le proporcionará información sobre el flujo sanguíneo o la dinámica dentro de los sistemas microfluídicos, como las tecnologías órgano en un chip. Las características adicionales de los fluoróforos captadas con la microscopía de tiempo de vida de fluorescencia (FLIM) permiten la investigación de procesos fisiológicos y amplían las capacidades de su LSM para obtener información sobre las interacciones proteína-proteína y parámetros ambientales como el pH, el oxígeno o la concentración de hierro.

Medición de la velocidad y dirección del flujo sanguíneo en los vasos de una larva de pez cebra

Dynamics Profiler

Acceso fácil a la dinámica molecular subyacente en las muestras vivas

Descubra la concentración, la difusión asimétrica y la dinámica del flujo moleculares de las proteínas fluorescentes en sus muestras vivas mediante una única y sencilla medición. Desarrolle un perfil más profundo de las moléculas en sus experimentos actuales, desde cultivos celulares hasta organoides y organismos enteros.

Medición de la velocidad y dirección del flujo sanguíneo en los vasos de una larva de pez cebra.

Cortesía de V. Hopfenmüller, Instituto Leibniz para el estudio del envejecimiento; Instituto Fritz Lipmann (FLI), Alemania

Efectos de la SUMOilación en la difusión de proteínas

Spectral RICS

Cartografía de las interacciones moleculares en el entorno celular

ZEISS Spectral RICS combina las imágenes del microscopio de barrido láser con la información sobre el comportamiento de las proteínas en su entorno celular.

Efectos de la SUMOilación en la difusión de proteínas: RICS puede utilizarse para medir los cambios de difusión que resultan de la interacción de proteínas. Mediante el análisis estándar de autocorrelación de RICS, podemos observar que el coeficiente de difusión disminuye proporcionalmente al tamaño de la cadena de SUMO. Este tipo de estudio también puede medir los cambios en la difusión de las proteínas de interés que hayan sido marcadas por la presencia de acciones farmacológicas, mutaciones u otras influencias.

Muestras cortesía de P. Hemmerich y T. Ulbricht, Core Facility Imaging, Instituto Leibniz para el estudio del envejecimiento, Jena, Alemania

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Microscopía de tiempo de vida de fluorescencia (FLIM)

Captura de imágenes funcional mediante diferencias en el decaimiento de la fluorescencia

La FLIM tiene en cuenta cómo determinados factores pueden influir en el tiempo de vida de la fluorescencia, como la concentración de iones u oxígeno, el pH y la temperatura. La FLIM es beneficiosa para analizar la proximidad de las moléculas y la interacción entre ellas.

Células U2OS teñidas con Flipper-TR. Se pueden realizar mediciones de diferencias de tiempo de vida de la fluorescencia inferiores a 100 ps.

Muestra cortesía de la Dra. Sarah Woolner, Universidad de Mánchester, Reino Unido.

Detalles sobre la tecnología

Preservación de la luz, sensibilidad y capacidades espectrales de última generación
imagen de producto de LSM 990 con Airyscan
  • Captura de pantalla de una conversación entre el asistente de IA de Microscopy Copilot y el usuario

    Microscopy Copilot, su asistente personal de IA, le ayuda a descubrir de forma interactiva nuevas posibilidades para sus experimentos de captura de imágenes. Haga preguntas cuando resulten relevantes para su trabajo actual. Reduzca el tiempo de formación obteniendo nueva información de inmediato. Desarrolle constantemente su investigación y explote el potencial de la configuración específica de su sistema LSM.

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    Trayectoria del haz de ZEISS LSM 990

    El diseño avanzado de la trayectoria del haz, la electrónica de gran ancho de banda y la óptica de primera calidad del LSM 990 garantizan altos niveles de preservación de la luz, la visualización de un alto rango dinámico y un amplio ancho de banda de longitudes de onda. Estas propiedades permiten adquirir imágenes de calidad de una gran variedad de muestras y estructuras, sus características moleculares e información espectral altamente multiplexada.

  • Eficiencia cuántica (QE) espectral habitual de los detectores ZEISS LSM 990
    Eficiencia cuántica (QE) espectral habitual de los detectores ZEISS LSM 990

    Eficiencia cuántica (QE) espectral habitual de los detectores ZEISS LSM 990

    Eficiencia cuántica (QE) espectral habitual de los detectores ZEISS LSM 990

    El LSM 990 puede equiparse con un detector GaAsP de 32 canales, que se complementa con dos detectores laterales y dos detectores NIR GaAs y GaAsP opcionales. Esta configuración única proporciona el mayor número de detectores disponible en los sistemas LSM. Para los experimentos con varios marcadores, el rango de emisión de cada marcador fluorescente se capta utilizando la tecnología de detectores más adecuada.

  • La combinación de la iluminación del punto láser, el barrido lineal y los detectores que pueden captar la señal en el modo de recuento de fotones convierten a LSM 990 en algo más que un dispositivo de captura de imágenes:

    • La espectroscopia de correlación de imágenes ráster espectral (Spectral RICS) puede generar un mapa de visualización de la concentración molecular y los coeficientes de difusión de un fotograma de imagen completo de una célula u otras estructuras. Con la Spectral RICS, las señales fluorescentes pueden separarse de forma espectral antes de analizar las interacciones entre proteínas.
    • La espectroscopia de correlación de fluorescencia (FCS) permite una visión no invasiva de concentraciones moleculares y procesos de difusión, lo que conlleva una comprensión más profunda de las funciones celulares. Para hacer una medición sobre la base de una sola molécula, puede utilizar líneas de láser monofotónicas o multifotónicas y utilizar toda la gama de emisión hasta 900 nm.
    • La espectroscopia de correlación cruzada por fluorescencia (FCCS) permite observar las interacciones moleculares entre dos o más moléculas marcadas diferencialmente. Al utilizar los numerosos detectores del sistema LSM 990, los experimentos de FCCS disponen de hasta 9 canales.
    • La microscopía de tiempo de vida de fluorescencia (FLIM) utiliza las diferencias en el decaimiento de la fluorescencia para separar componentes. Esta técnica se utiliza para la captura funcional de imágenes y tiene en cuenta cómo múltiples factores pueden influir en el tiempo de vida de la fluorescencia, como la concentración de iones u oxígeno, el pH y la temperatura. La FLIM es beneficiosa para mediciones FRET, ya que analiza la proximidad de las moléculas y la interacción entre ellas.
    • La transferencia de energía por resonancia de fluorescencia (FRET) utiliza enfoques de emisión sensibilizada o fotoblanqueo del aceptor para investigar las distancias o interacciones entre proteínas.
    • La recuperación de fluorescencia posterior al fotoblanqueo (FRAP) utiliza cualquiera de las líneas de láser para realizar experimentos flexibles de fotoblanqueo. El mismo principio se aplica a los experimentos de fotomanipulación en general, por ejemplo, para investigar el movimiento intracelular o seguir todo el movimiento celular dentro de organismos mediante la fotoconversión de marcadores de proteínas fluorescentes.

Descargas

  • Vista previa de imagen de Libertad para explorar

    Libertad para explorar

    ZEISS LSM 990
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  • Vista previa de imagen de Al ritmo del pulso de la vida

    Al ritmo del pulso de la vida

    ZEISS LSM Lightfield 4D
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  • Vista previa de imagen de Investigar más proteínas en paralelo

    Investigar más proteínas en paralelo

    ZEISS LSM 990 Spectral Multiplex
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  • Vista previa de imagen de Posibilidades experimetales que supera los estádares cofocales

    Posibilidades experimetales que supera los estádares cofocales

    ZEISS LSM Airyscan
    1 MB
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