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ZEISS LSM 990

Le meilleur de l'imagerie multimodale dans un seul système confocal

Le ZEISS LSM 990 offre une gamme étendue d'options d'imagerie, facilitant l'exploration de nouvelles dimensions dans les projets de recherche. Il permet d'approfondir les études biologiques grâce à une super-résolution de 90 nm, à l'imagerie volumétrique à haute vitesse, ainsi qu'à la séparation simultanée de 10 marqueurs fluorescents. Cet instrument est conçu pour contribuer à la compréhension des dynamiques moléculaires, des interactions protéiques et des processus physiologiques, tout en élargissant les possibilités d'imagerie en direct et de conception expérimentale multimodale.

  • Une multitude de possibilités pour vos travaux de recherches
  • Une imagerie de fluorescence aussi colorée que la vie elle-même
  • Des informations inédites sur les dynamiques moléculaires et les interactions entre les protéines
image de la brochure LSM 990

ZEISS LSM 990

Le meilleur de l'imagerie multimodale dans un seul système confocal

Au-delà de l'imagerie confocale

Une multitude de possibilités pour vos travaux de recherches

Les microscopes confocaux sont devenus synonymes de sectionnement optique avancé et de flexibilité maximale en imagerie, aucun autre microscope ne pouvant accueillir une telle variété d'échantillons et d'expériences. Le ZEISS LSM 990 pousse cette polyvalence encore plus loin en combinant une super-résolution à haute vitesse, une acquisition instantanée de volumes inégalée, une pénétration en profondeur supérieure et une séparation spectrale en temps réel de plus de 10 marqueurs lors d'un seul balayage d'image. De plus, l'intégration de la photomanipulation ou des mesures de dynamiques moléculaires permet des découvertes qui vont au-delà de la simple imagerie d'intensité de fluorescence. Tous les composants du système, en particulier Airyscan 2, Lightfield 4D et jusqu'à 36 détecteurs spectraux, ont été développés pour offrir une imagerie d'échantillons vivants de premier ordre. Laissez cours à votre créativité en matière de conception expérimentale et enrichissez vos recherches scientifiques.

Les cellules sécrétoires de l'intestin grêle produisent des trous dans la bordure en brosse apicale en f-actine. Dapi (blanc) : ADN, phalloïdine (vert) : f-actine, UEA-1 (rouge) : cellules sécrétoires (Paneth, gobelet), COX-1 (violet) : cellule touffue.

L'essence de l'imagerie confocale

Sectionnement optique haute résolution de grands échantillons

Organoïde primaire de souris de trois jours. Les cellules sécrétoires de l'intestin grêle produisent des trous dans la bordure en brosse apicale en f-actine. Dapi (blanc) : ADN, phalloïdine (vert) : f-actine, UEA-1 (rouge) : cellules sécrétoires (Paneth, gobelet), COX-1 (violet) : cellule touffue.

Avec l'aimable autorisation de Fabian Gärtner, Université de Stuttgart, Allemagne

DAPI pour ADN (montrant les noyaux et les spermatozoïdes), F-Actine marquée à la phalloïdine. Projection de l'intensité maximale d'une pile de 54 tranches.

Airyscan

Imagerie non invasive en super-résolution de structures extrêmement petites

Au lieu que la lumière ne passe par un sténopé pour atteindre un détecteur unique, l'Airyscan se compose de 32 éléments agissant comme de minuscules sténopés, qui prennent une image dans le plan du sténopé à chaque position scannée. En combinant 32 de ces petits détecteurs semblables à des sténopés avec un détecteur de zone large, Airyscan permet de recueillir davantage de lumière et d'enregistrer des informations de fréquence plus élevée.

Flagelles de spermatozoïdes dans des testicules de drosophile. DAPI pour ADN (montrant les noyaux et les spermatozoïdes), F-Actine marquée à la phalloïdine. Projection de l'intensité maximale d'une pile de 54 tranches.

Échantillon fourni avec l'aimable autorisation de Zhaoxuan Zhang, Université océanographique de Chine, Qingdao

Neurones pyramidaux (YFP-H) et microglies (CxCR3-GFP) imagés dans un cerveau entier de souris.

Microscopie multiphotons

Explorer plus en profondeur

La microscopie multiphotons est parfaite pour récupérer des informations au plus profond des tissus tels que le cerveau, les organismes entiers, les organoïdes ou les sphéroïdes, dans des échantillons vivants ou des tissus transparisés. Les longueurs d'onde d'excitation les plus élevées (690 – 1300 nm) sont moins absorbées et moins diffusées par les tissus et un sténopé n'est nécessaire pour réaliser un sectionnement optique.

Neurones pyramidaux (YFP-H) et microglies (CxCR3-GFP) imagés dans un cerveau entier de souris.

Avec l'aimable autorisation de Severin Filser, DZNE Bonn, Allemagne

Chambres d'œufs de drosophile colorées pour la F-actine (phalloidine, magenta) et la DE-Cadhérine (cyan). Avec l'aimable autorisation de T. Jacobs, AG Luschnig, WWU Münster ; avec T. Zobel, Imaging Network de Münster, Allemagne
Chambres d'œufs de drosophile colorées pour la F-actine (phalloidine, magenta) et la DE-Cadhérine (cyan). Avec l'aimable autorisation de T. Jacobs, AG Luschnig, WWU Münster ; avec T. Zobel, Imaging Network de Münster, Allemagne

LSM Plus

Améliorer l'expérience confocale

LSM Plus améliore toute expérience confocale avec facilité, indépendamment du mode de détection ou de la plage d'émission. Sa déconvolution par filtre de Wiener linéaire ne nécessite pratiquement aucune interaction manuelle et assure un résultat quantitatif fiable. Les informations sur les propriétés optiques sous-jacentes du système, telles que l'objectif, l'indice de réfraction et la plage d'émission, sont utilisées pour adapter automatiquement les paramètres de traitement et ainsi obtenir les meilleurs résultats possibles.

Chambres d'œufs de drosophile colorées pour la F-actine (phalloidine, magenta) et la DE-Cadhérine (cyan).

Avec l'aimable autorisation de T. Jacobs, AG Luschnig, WWU Münster ; avec T. Zobel, Imaging Network de Münster, Allemagne

Lightfield 4D

Acquisition volumique à grande vitesse de cellules fortement mobiles chez des animaux en développement

Afin de véritablement capturer l'essence des processus biologiques, l'imagerie doit être effectuée en 4D, le volume et le temps étant tous deux des facteurs primordiaux pour étudier les systèmes vivants. Lightfield 4D apporte une solution unique en imageant un volume entier à un moment précis et sans temporisation.

Cœur battant d'un embryon de poisson zèbre à 3 jours après fécondation. Acquisition de 3 battements de cœur complets en 1,2 seconde et à 80 volumes par seconde.

Avec l'aimable autorisation de Stone Elworthy et d'Emily Noël, School of Biosciences, University of Sheffield, Royaume-Uni

Au-delà des limites spectrales

Une imagerie de fluorescence aussi colorée que la vie elle-même

L'identification et la séparation fiable des marqueurs fluorescents sont essentielles pour chaque expérience multicouleur, d'autant plus que le choix des marquages s'est élargi jusqu'à la plage proche infrarouge (NIR) et que les collections de biomarqueurs pour le multiplexage spectral permettent d'identifier simultanément un plus grand nombre de structures. Avec jusqu'à 36 canaux qui garantissent une efficacité quantique optimale pour chaque longueur d'onde, une plage d'émission totale allant de 380 nm à 900 nm peut être acquise en une seule fois. Vous pouvez sélectionner la plage de détection souhaitée pour chaque marqueur afin d'améliorer vos résultats, ou utiliser tous les canaux dans la plage d'émission requise pour recueillir à chaque balayage des informations spectrales complètes sur chaque fluorophore. Pour maximiser la productivité lors de l'acquisition expérimentale multidimensionnelle, le démixage spectral s'effectue en temps réel, tandis que LSM Plus améliore le rapport signal/bruit et la résolution au sein du même pipeline de traitement.

Multiplexage spectral avancé des parois cellulaires de cellules de levure bourgeonnantes (Saccharomyces cerevisiae) : 13 marqueurs plus l'autofluorescence acquis en un seul suivi à l'aide de 5 lasers et 36 détecteurs, image démixée des 13 marqueurs sans autofluorescence.

Échantillon fourni avec l'aimable autorisation de Michal Skruzny, ZEISS Microscopy GmbH

Échantillon de tranche de cerveau à 5 couleurs acquise en mode Lambda et traitée avec LSM Plus. Canaux après démixage spectral : DAPI, Map2-A488, Parvalbumin-A568, Iba-1-A647, VGAT-A750, Autofluorescence

Échantillon de tranche de cerveau à 5 couleurs acquise en mode Lambda et traitée avec LSM Plus. Canaux après démixage spectral : DAPI, Map2-A488, Parvalbumin-A568, Iba-1-A647, VGAT-A750, Autofluorescence.

Échantillon fourni avec l'aimable autorisation de Luisa Cortes, Centre d'imagerie microscopique de Coimbra, CNC, Université de Coimbra, Portugal

Cellules COS-7, DAPI (magenta), anti-tubuline Alexa 568 (bleu), actine phalloïdine-OG488 (jaune) et Tom20-Alexa 750 (rouge).

Cellules COS-7, DAPI (magenta), anti-tubuline Alexa 568 (bleu), actine phalloïdine-OG488 (jaune) et Tom20-Alexa 750 (rouge). Imagées en mode Lambda sur tout le spectre visible et proche infrarouge (NIR). Signaux individuels séparés par démixage linéaire. Projection de l'intensité maximale d'une pile z.

Échantillon fourni avec l'aimable autorisation de Urs Ziegler et Jana Doehner, Université de Zurich, ZMB, Suisse

Au-delà de l'imagerie

Des informations inédites sur les dynamiques moléculaires et les interactions entre les protéines

Allez au-delà de l'imagerie de fluorescence et ajoutez de nouvelles dimensions à vos expériences. Utilisez la spectroscopie de corrélation de fluorescence (FCS) et Spectral RICS pour obtenir simultanément pour plusieurs marqueurs des informations sur les concentrations, les mouvements et les interactions protéiniques. Les données spatiales fournies par le détecteur Airyscan vous permettent d'obtenir un accès unique au comportement moléculaire des protéines, vous fournissant des informations sur le flux sanguin ou encore la dynamique au sein des systèmes microfluidiques, tels que les organes sur puce. Des caractéristiques supplémentaires des fluorophores capturées avec la microscopie en temps de vie de fluorescence (FLIM) permettent d'étudier les processus physiologiques et d'étendre les capacités de votre microscope à balayage laser afin d'obtenir des informations sur les interactions protéine-protéine et les paramètres environnementaux tels que le pH, l'oxygène ou la concentration en fer.

Mesure de la vitesse et de la direction du flux sanguin dans les vaisseaux de larves de poisson zèbre

Dynamics Profiler

Accès simplifié aux dynamiques moléculaires sous-jacentes au sein d'échantillons vivants

Mesurez facilement et en une seule fois la concentration moléculaire, la diffusion asymétrique et la dynamique de flux des protéines fluorescentes dans vos échantillons vivants. Établissez un profil plus approfondi des molécules pour effectuer vos expériences, qu'il s'agisse de cultures cellulaires, d'organoïdes ou d'organismes entiers.

Mesure de la vitesse et de la direction du flux sanguin dans les vaisseaux de larves de poisson zèbre.

Avec l'aimable autorisation de V. Hopfenmüller, Leibniz Institute on Aging – Institut Fritz Lipmann (FLI), Allemagne

Effets de la SUMOylation sur la diffusion des protéines

Spectral RICS

Cartographie des interactions moléculaires dans l'environnement cellulaire

ZEISS Spectral RICS allie l'imagerie LSM aux informations concernant le comportement des protéines dans leur environnement cellulaire.

Effets de la SUMOylation sur la diffusion des protéines : La RICS peut être utilisée pour mesurer les changements de diffusion résultant de l'interaction des protéines. L'analyse RICS d'auto-corrélation standard nous permet de constater que le coefficient de diffusion diminue en fonction de la taille de la chaîne SUMO. Ce type d'analyses permet également de mesurer les changements de diffusion des protéines d'intérêt marquées en présence de traitements médicamenteux, de mutations ou d'autres influences.

Échantillons fournis avec l'aimable autorisation de P. Hemmerich et T. Ulbricht, Core Facility Imaging, Leibniz Institute on Aging, Jena, Allemagne

Fluorescence Lifetime Imaging Microscopy (FLIM)

Imagerie fonctionnelle utilisant les différences de décroissance de la fluorescence

Le FLIM prend en compte comment la durée de vie de la fluorescence peut être influencée par des facteurs tels que la concentration en ions ou en oxygène, le pH et la température. Le FLIM est particulièrement utile pour analyser la proximité et l'interaction entre molécules.

Cellules U2OS colorées avec Flipper-TR. Les écarts de durée de vie de fluorescence inférieurs à 100 ps peuvent être mesurés.

Échantillon fourni avec l'aimable autorisation du Dr Sarah Woolner, Université de Manchester, Royaume-Uni.

Aperçu de la technologie

Efficacité optique optimisée, sensibilité améliorée et capacités spectrales avancées

image de LSM 990 avec Airyscan
  • Capture d'écran d'une conversation entre l'assistant IA Microscopy Copilot et l'utilisateur

    Microscopy Copilot est votre assistant IA personnel. Il vous aide à découvrir de manière interactive de nouvelles possibilités pour réaliser vos expériences d'imagerie. Posez des questions probantes pour vos travaux en cours. Réduisez le temps de formation en obtenant immédiatement de nouvelles informations. Faites passer vos recherches au niveau supérieur et explorez tout le potentiel de votre système LSM spécifique.

  • Trajet optique du ZEISS LSM 990

    La conception avancée du trajet optique du LSM 990, son électronique à large bande passante et ses optiques de haute qualité garantissent une préservation optimale de la lumière, une visualisation d'une large gamme dynamique et une large bande de longueurs d'onde. Ces propriétés permettent l'acquisition d'images de haute qualité pour une grande variété d'échantillons et de structures, leurs caractéristiques moléculaires et des informations spectrales hautement multiplexées.

  • Rendement quantique (QE) spectral typique des détecteurs ZEISS LSM 990
    Rendement quantique (QE) spectral typique des détecteurs ZEISS LSM 990

    Rendement quantique (QE) spectral typique des détecteurs ZEISS LSM 990

    Rendement quantique (QE) spectral typique des détecteurs ZEISS LSM 990

    Le LSM 990 peut être équipé d'un détecteur GaAsP à 32 canaux, complété par deux détecteurs latéraux et deux détecteurs optionnels NIR GaAs et GaAsP. Cette configuration unique offre le plus grand nombre de détecteurs disponibles dans les systèmes LSM. Pour les expériences multi-marqueurs, la plage d'émission de chaque marqueur fluorescent est capturée en utilisant la technologie de détection la plus appropriée.

  • La combinaison de l'illumination par laser, du balayage linéaire et des détecteurs capables de capturer le signal en mode de comptage de photons fait du LSM 990 bien plus qu'un simple dispositif d'imagerie :

    • Spectral Raster Image Correlation Spectroscopy (Spectral RICS) : cette technique permet de générer une carte des concentrations moléculaires et des coefficients de diffusion sur une trame d'image complète d'une cellule ou d'autres structures. Avec le Spectral RICS, les signaux fluorescents peuvent être séparés spectralement avant l'analyse des interactions protéiques.
    • Fluorescence Correlation Spectroscopy (FCS) : cette méthode offre un aperçu non invasif des concentrations moléculaires et des processus de diffusion, conduisant à une compréhension approfondie des fonctions cellulaires. Pour des mesures au niveau de la molécule unique, vous pouvez utiliser des lignes laser mono- ou multiphotoniques et exploiter toute la gamme d'émission jusqu'à 900 nm.
    • Fluorescent Cross Correlation Spectroscopy (FCCS) : cette technique permet d'observer les interactions moléculaires entre deux ou plusieurs molécules marquées différemment. En utilisant les nombreux détecteurs du système LSM 990, jusqu'à 9 canaux sont disponibles pour les expériences FCCS.
    • Fluorescence Lifetime Imaging Microscopy (FLIM) : cette méthode utilise les différences de décroissance de fluorescence pour séparer les composants. Elle est utilisée pour l'imagerie fonctionnelle et prend en compte comment la durée de vie de la fluorescence peut être influencée par divers facteurs, tels que la concentration en ions ou en oxygène, le pH et la température. Le FLIM est particulièrement utile pour les mesures FRET, analysant la proximité et l'interaction entre molécules.
    • Fluorescence Resonance Energy Transfer (FRET) : cette technique utilise des approches d'émission sensibilisée ou de photoblanchiment de l'accepteur pour étudier les interactions protéiques et les distances.
    • Fluorescence Recovery after Photobleaching (FRAP) : cette méthode utilise n'importe quelle ligne laser pour réaliser des expériences de photoblanchiment flexibles. Le même principe s'applique aux expériences de photomanipulation en général, par exemple pour étudier le mouvement intracellulaire ou suivre le mouvement de cellules entières au sein d'organismes par photoconversion de marqueurs protéiques fluorescents.

Téléchargements

  • Explorer en toute liberté

    ZEISS LSM 990

    41 MB
  • Des possibilités expérimetales qui surpasset les ormes e microscopie cofocale

    ZEISS LSM Airyscan

    11 MB
  • Étudier un plus grand nombre de protéines en parallèle

    ZEISS LSM 990 Spectral Multiplex

    13 MB
  • Suivre le rythme des processus biologiques en temps réel

    ZEISS LSM Lightfield 4D

    9 MB


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